假尿嘧啶 Ψ & Inosine RNA单碱基测序
一次化学转化同时把两种修饰读出来:2-溴丙烯酰胺特异作用于 Ψ、使它被读作 C,肌苷被读作鸟苷。两类信号各成通道,分别给出位点与修饰比例。
01这项服务报告什么
我们把这条路线做成从样本到数据的完整流程:RNA 样本质检、化学转化与文库构建、上机测序、生物信息分析。每个位点都会注释到参考转录组,给出基因组坐标、宿主基因与所在功能区域。
服务提供三种可报告范围 —— mRNA、mRNA 与 lncRNA、以及 rRNA。rRNA 位点按参考 rRNA 坐标单独注释,可判读范围取决于 Ψ 与肌苷在 rRNA 上的丰度与测序覆盖。
02服务优势
- 双修饰并行读出:同一次转化同时报告 Ψ 与肌苷,两种修饰不必拆成两个实验。
- 双通道区分:Ψ 被读作 C、肌苷被读作鸟苷,两类信号在数据层面可以独立判读,互不混淆。
- 各自的位点级修饰比例:每种修饰分别给出单碱基分辨率下的修饰比例,两条通道的定量互不干扰。
- 无抗体化学法:不依赖 Ψ 或肌苷抗体,回避交叉反应与富集偏倚。
- 样本利用率高:一份 RNA 投入同时产出两种修饰的图谱,适合材料有限的样本。
- 注释完备:每个位点给出基因组坐标、宿主基因与功能区域归属。
可选转录本范围
mRNA|mRNA 与 lncRNA|rRNA03背景与检测原理
Ψ 与肌苷都会改变逆转录的读出,但两者在序列上的表现并不相同。把两种信号放到同一次转化里拿到,既能省下一份样本,也避开了两次实验之间的批间差异。
BACS-seq 用 2-溴丙烯酰胺实现这一点:试剂特异作用于假尿嘧啶,使它在逆转录中被读作 C;肌苷本身被读作鸟苷。两类信号在比对结果里各自成通道,分别换算成单碱基分辨率下的修饰比例,整条路线不使用抗体。同一流程也能覆盖长链非编码 RNA,让 mRNA 与 lncRNA 上的 Ψ 与肌苷在同一次实验里并行分析。

04实验流程
从样本到 Ψ 与肌苷两套单碱基数据共五步:

05生物信息分析与交付
比对完成后分两路判读:一路按特异性转化特征读出 Ψ,一路按 A→G 的差异读出肌苷,两条通道各自换算修饰比例。下游给出 motif 与 metagene 分布、组间差异与功能富集,并配套基因组浏览器轨道文件。
交付内容
- Ψ 与 I mRNA 测序原始数据文件(FASTQ),可直接提交 GEO/SRA 等公共数据库。
- 样本与测序质控报告,含排序建索引的 BAM 比对文件及核心比对统计。
- 高置信度单碱基 Ψ 与 I 位点表(XLSX),含基因组坐标、宿主基因与化学计量。
- 单碱基 Ψ 与 I 转录本特征分布图与 motif 一致性分析图(PDF/PNG)。
- 位点级 Ψ 与 I 差异分析表(XLSX),含组间倍数变化与显著性统计。
- Ψ 与 I 修饰基因的功能富集分析报告(HTML/PDF/PNG)。
- 基因组浏览器可视化文件(bigWig/bedGraph)与结构化项目报告。
06研究应用
- 双修饰图谱:在同一批样本上并行绘制 mRNA 与 lncRNA 的 Ψ 与肌苷位点图谱。
- 编辑事件读出:把肌苷信号直接当作 A-to-I 编辑的读出,追踪编辑位点与编辑水平。
- 翻译与稳定性:比较 Ψ 与肌苷对同一转录本的翻译效率、转录本稳定性各自的贡献。
- 疾病标志物:在疾病与对照之间分别筛选两种修饰的差异位点。
- 功能读数说明:翻译效率、转录本半衰期、蛋白或表型等功能读数由研究方或合作平台完成,不在本门户服务清单内。
07常见问题
2-溴丙烯酰胺为什么能同时区分 Ψ 和肌苷?
试剂只对假尿嘧啶发生特异反应,改写了它在逆转录中的读出;肌苷的读出方式不由这套反应决定,仍按自身的特征被识别。两条读出通路互不覆盖,所以能在同一份数据里分开判读。
两种修饰的定量会不会互相干扰?
不会。Ψ 走转化特征通道;肌苷走 A→G 的差异通道,两类信号在比对层面就分开了,各自的修饰比例由自己通道内的 reads 比例换算。
肌苷信号能直接当作编辑事件来读吗?
可以作为直接读出。肌苷是 A-to-I 编辑的产物,它的位点与比例反映编辑发生的位置和程度;若要区分编辑事件与基因组本身的 A/G 差异,需要结合参考基因组信息判断。
一份 RNA 同时做两种修饰,会不会牺牲灵敏度?
转化与建库共用同一份材料,测序深度按两种修饰的判读需求一起确定;相比分两次实验,共用材料反而减少了样本之间的差异来源。
mRNA、lncRNA 与 rRNA 的位点能不能一起比较?
要分开注释再比较。mRNA 与 lncRNA 可以在同一次实验里并行分析,rRNA 位点按参考 rRNA 坐标单独报告。rRNA 能保留多少位点,取决于 Ψ 与肌苷的丰度以及测序覆盖。
08参考文献
- Xu H, Kong L, Cheng J, et al. Absolute quantitative and base-resolution sequencing reveals comprehensive landscape of pseudouridine across the human transcriptome. Nature Methods 2024;21(11):2024-2033. DOI 10.1038/s41592-024-02439-8
- Dai Q, Zhang LS, Sun HL, et al. Quantitative sequencing using BID-seq uncovers abundant pseudouridines in mammalian mRNA at base resolution. Nature Biotechnology 2023;41(3):344-354. DOI 10.1038/s41587-022-01505-w