跳到正文
RNA 修饰检测服务 · 单碱基分辨率定位与定量 服务总览 免费热线 400-886-5058

假尿嘧啶 Ψ RNA 修饰 RIP 测序(Ψ-RIP-Seq)

假尿嘧啶是尿苷换了连接方式之后的形态 —— 碱基没变,只是结构转了。抗体把带 Ψ 的片段富集出来测序,给出转录本与区段层面的分布。

01这项服务报告什么

Ψ-RIP-Seq 用识别假尿嘧啶的抗体富集含该修饰的 RNA 片段后测序,报告 Ψ 在哪些转录本与区段上富集,结果落在区段层面。

假尿嘧啶的特殊之处在于它的化学改变很小:尿苷变成了异构体,碱基还是那个碱基,与腺嘌呤的配对也照常发生。常规逆转录测序读出来的序列和尿苷没有区别,这是为什么读 Ψ 必须换一种方式 —— 要么先富集,要么先做化学改造。

这条路线走的是先富集:给出分布与组间差异,不缩到单个碱基、也不给修饰比例。需要位点与比例时,交给化学法的单碱基路线。

02服务优势

  • 读出化学上「看不出来」的修饰:异构化不改变配对行为,抗体路线绕开了这个限制。
  • 不做碱基改造:样本只经过片段化与富集,不引入强酸或强氧化条件。
  • 适合低占比的转录本范围:mRNA 上的 Ψ 含量远低于 tRNA,先富集能把信号从背景里抬出来。
  • 输入对照配套:未富集的一份同时测序,用来区分真正的富集与丰度造成的假象。
  • 与化学法路线互补:化学法负责位点与比例,这条线负责先看分布、判断值不值得往下做。

可选转录本范围

mRNA|mRNA 与 lncRNA

03背景与检测原理

Ψ 在 tRNA 与 rRNA 上的含量很高,在 mRNA 上则低得多。做转录本范围的比较时,这一点值得留意:不同 RNA 组分对信号的贡献不一样,样本制备方式会影响你看到的是哪一层的 Ψ。

抗体富集的流程与其他富集路线一致:片段化之后,识别 Ψ 的抗体捕获带修饰的片段,未修饰片段被洗掉,富集产物与输入对照分别建库测序,比较覆盖深度找出被抬高的区段。抗体结合有偏好,所以结论停在区段层面 —— 要位点,走化学法单碱基路线。

Ψ-RIP-Seq 检测假尿嘧啶的原理示意
图 1。Ψ-RIP-Seq 检测原理。抗体富集带 Ψ 的片段,与输入对照比较覆盖深度后得到区段层面的分布。
假尿嘧啶在 mRNA 上的分布是被调控的,而不只是结构上的装饰 —— 但要把这份分布读出来,得先有一双认它的「手」。Schwartz S. et al., Nature 2014 · DOI 10.1038/nature13802

04实验流程

从 RNA 样本到区段富集图谱,见下图。

Ψ-RIP-Seq 实验流程
图 2。Ψ-RIP-Seq 实验流程,从 RNA 样本到区段层面的富集分布。

05生物信息分析与交付

两组文库分别比对后,逐区段比较覆盖深度,输出候选富集区段并做注释与组间差异分析。统计以区段为单位;交付里同时写明这条路线不定位到单个碱基。

交付内容

  • 富集与输入对照两套文库的原始测序数据(FASTQ)。
  • 质控报告与比对文件(BAM),含核心比对统计。
  • 候选富集区段表(XLSX):区段坐标、注释基因与富集倍数。
  • 区段覆盖分布图(PDF/PNG)。
  • 组间差异富集表(XLSX)与功能富集报告。
  • 项目说明文档:读数含义与适用边界。

06研究应用

  • 先摸分布:在决定做位点级实验之前,先看 Ψ 的整体分布落在哪些转录本与区段上。
  • 条件比较:比较不同处理或状态下 Ψ 分布的差异,为后续机制研究挑对象。
  • 与翻译读数并读:把富集变化与同一批样本的翻译效率变化放在一起看趋势。
  • 方法衔接:用富集结果圈定范围,再交给化学法单碱基路线读出位点与比例。

07常见问题

为什么 Ψ 不能直接用常规测序读出来?

因为它是尿苷的异构体:碱基没换、配对行为也没变,逆转录读出来的序列和尿苷完全一样,序列里不含这条线索。

那这条路线和化学法单碱基路线是什么关系?

互补关系。抗体富集先给出分布(哪些转录本与区段),化学法再在这些范围内读出具体位点与修饰比例。

抗体有结合偏好,会不会影响结论?

会有影响,所以结论停在区段层面。判断某个区段是否真的富集,要结合输入对照一起看。

tRNA 上的高丰度 Ψ 会不会干扰转录本范围的检测?

这是一个需要在设计阶段就考虑的问题:不同 RNA 组分对信号贡献不同,样本制备方式会影响看到的是哪一层。具体做法我们会在确认项目时一并说明。

样本量大的项目适合先做这条线吗?

适合。它的颗粒度粗、成本相对低,适合先在大样本里筛出有差异的组,再挑代表性样本做位点级实验。

08参考文献

  1. Schwartz S, Bernstein D A, Mumbach M R, et al. Transcriptome-wide mapping reveals widespread dynamic-regulated pseudouridylation of ncRNA and mRNA. Nature 2014;505(7481):143–146. DOI 10.1038/nature13802

不确定该从哪条路线入手?

把样本类型、物种与研究问题发给我们,我们按你的问题给出可执行的检测组合建议。