tRNA 与 tRF&tiRNA 研究相关服务
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tRNA 表观转录组修饰图谱解决方案

一次回答两个问题:样本里有哪些修饰、水平多少,以及它们具体落在每条 tRNA 的哪个位置。本方案把 55 种核苷修饰的全谱定量(LC-MS)与单碱基分辨率的修饰定位(TRAC-Seq、HAC-Seq、修饰测序、氨酰化测序)组合成定量、可定位的修饰图谱。

方案概览

tRNA 表观转录组修饰图谱要回答两个问题:有哪些修饰、水平如何,以及它们具体在哪条 tRNA 的哪个碱基上。方案用 LC-MS 做 55 种核苷修饰的全谱定量,用 TRAC-Seq、HAC-Seq、tRNA 修饰测序(m¹A / m³C / m¹G / m²,²G)与氨酰化测序把修饰定位到单碱基,把修饰状态与 tRNA 功能、疾病联系起来。

tRNA 携带的转录后修饰在数量与化学多样性上都是最多的一类。这些修饰对 tRNA 的折叠、稳定性与解码等核心功能至关重要 [1];而修饰与修饰酶的缺陷则与肿瘤、糖尿病、神经系统综合征、心脏疾病以及线粒体相关疾病等多种人类疾病相关 [3]。研究 tRNA 修饰,与刻画 tRNA 表达谱几乎同样重要。

可靠的修饰图谱需要两条互补的证据线。单碱基测序把具体修饰定位到特定 tRNA 上:m⁷G TRAC-Seq 利用 m⁷G 处的还原性切割;m³C HAC-Seq 利用 m³C 处的肼-苯胺切割;tRNA 修饰测序通过比较去甲基化处理与未处理样本,识别 m¹A、m³C、m¹G 与 m²,²G 位点;tRNA 氨酰化测序则检测逆转录过程中修饰引起的错误掺入,同时给出表达与氨酰化。全谱定量(LC-MS)把 tRNA 水解成单个核苷,一次定量 55 种核苷修饰,给出样本的整体修饰谱。

服务一览

服务在这个方案中的作用
m⁷G tRNA 单碱基测序(TRAC-Seq)m⁷G,单碱基分辨率
m³C tRNA 单碱基测序(HAC-Seq)m³C,单碱基分辨率
tRNA 修饰测序(m¹A / m³C / m¹G / m²,²G)四类甲基化修饰一次检测,单碱基分辨率
tRNA 氨酰化测序(mim-tRNA-Seq)修饰覆盖较广(如 m¹A、m¹G、m³C、acp3U),并同时给出表达与氨酰化
LC-MS tRNA 修饰检测55 种核苷修饰的全谱定量

上表中的检测均由数谱生物提供,可以单独使用,也可以按课题所处阶段组合。

方案优势

为什么用这套方案刻画 tRNA 修饰图谱

  • 全谱 + 单碱基:LC-MS 一次定量 55 种核苷修饰,测序方法把具体修饰定位到单碱基
  • 化学特异性:TRAC-Seq 与 HAC-Seq 依靠高特异性化学反应而非抗体,无抗体背景并可给出修饰比例
  • 一次测四类修饰:tRNA 修饰测序通过比较去甲基化处理与未处理样本,同时检测 m¹A、m³C、m¹G 与 m²,²G
  • 同时给出表达与氨酰化:tRNA 氨酰化测序一次给出 tRNA 表达、修饰与氨酰化三个层面
  • 从样本到数据:从样本质检、tRNA 分离、建库或核苷分析、测序或 LC-MS/MS 采集,到生物信息与报告
  • 可与其它服务组合:与 tRNA 测序、tRF&tiRNA 测序、PCR 芯片与 rtStar™ 预处理试剂盒配合使用

背景介绍

tRNA 是 mRNA 解码与蛋白翻译的基础组件,其转录后修饰在数量与化学多样性上都是最多的一类,对 tRNA 的折叠、稳定性与解码等核心功能至关重要 [1]。tRNA 主体上的修饰主要影响结构折叠、稳定性、刚性;反密码子环上的修饰则通过开放环结构、密码子-反密码子配对、摆动与防止翻译移码来影响解码。修饰核苷还作为氨酰-tRNA 合成酶的识别标志,保证氨基酸识别的准确性 [2]。一般而言,修饰不足的 tRNA 会被导向降解。

修饰与修饰酶的缺陷与肿瘤、糖尿病、神经系统综合征、心脏疾病以及线粒体相关疾病相关 [3]。反密码子环第 32 位的 m³C 维持 tRNA 结构、解码准确性与翻译效率,m³C 相关酶与 tRNA m³C 修饰的失调已与肝细胞癌、乳腺癌等肿瘤的进展和转移,以及神经与线粒体疾病联系起来。可变环第 46 位的 m⁷G 由 METTL1/WDR4 复合物添加,维持 tRNA 结构完整性并提高富含相应密码子的 mRNA 的翻译,METTL1 过表达在白血病、胶质母细胞瘤、胆管癌与肺癌中推动肿瘤发生。除丰度之外,tRNA 表达与氨酰化(决定翻译活性的装载状态)也是表观转录组图谱需要回答的内容。

实验与数据分析流程

从样本质检到可解读的修饰图谱

样本与 RNA 质检保留小 RNA 的提取与严格 QC
全谱定量LC-MS 定量 55 种核苷修饰
单碱基定位TRAC / HAC / 修饰测序定位位点
生信分析切割分数、甲基化指数与 motif 分析
整合解读把整体修饰与位点数据对应起来

生物信息与交付

每个服务都包含详细分析:TRAC-Seq 通过切割分数给出 m⁷G 位点与水平;HAC-Seq 通过切割比例识别单碱基分辨率的 m³C 位点;修饰测序同时分析修饰位点、甲基化水平与 tRNA 表达;氨酰化测序给出较完整的 tRNA 多组学数据与详细注释;LC-MS 项目报告原始与归一化峰数据、核苷总离子流色谱图与样本间差异修饰。

  • LC-MS 原始与归一化峰数据
  • 核苷的总离子流色谱图
  • 样本间核苷修饰的差异分析
  • 单碱基分辨率的修饰位点与水平(切割分数 / 甲基化指数 / 错误掺入)
  • 差异表达或差异修饰 tRNA 的火山图
  • 用于位点识别的 IGV 比对展示
  • 修饰 tRNA 的序列 motif 分析
  • 可直接用于展示与汇报的图表

研究应用

tRNA 修饰图谱在生物学与疾病研究中的应用

  • 肿瘤生物学:m⁷G 修饰的 tRNA(如 Arg-TCT-4-1、Lys-CTT、Val-AAC)在白血病、胶质母细胞瘤、胆管癌与肺癌中推动肿瘤发生(Mol Cell, 2021);m³C 失调与肝细胞癌、乳腺癌的进展和转移相关
  • 神经与线粒体疾病:METTL8 依赖的线粒体 tRNA m³C 是神经干细胞维持所必需(Cell Stem Cell, 2023);DALRD3 依赖的 tRNA-Arg 修饰对神经功能至关重要(Nat Commun, 2020)
  • 翻译调控与细胞命运:m³C32 修饰控制富含丝氨酸密码子的 mRNA 翻译、细胞周期与 DNA 损伤应答(Nat Commun, 2024);m⁷G 修饰的 tRNA 提高富含相应密码子的原癌 mRNA 的翻译效率
  • 干细胞与发育:METTL1/WDR4 介导的 m⁷G 甲基化组是胚胎干细胞自我更新与分化所必需(Mol Cell, 2018);METTL6 介导的 tRNA-Ser 修饰支持多能性与肿瘤发生(Sci Adv, 2020)
  • 代谢与心血管疾病:tRNA 修饰谱与糖尿病、心脏疾病相关;谷氨酰-脯氨酰-tRNA 合成酶在心脏纤维化中调控促纤维化蛋白的合成(Circ Res, 2020)
  • 耐药与治疗:缬氨酸氨酰-tRNA 合成酶促进黑色素瘤治疗耐药(Nat Cell Biol, 2024);同时靶向 m⁷G tRNA 修饰与组蛋白乙酰化可实现骨肉瘤化疗增敏(Adv Mater, 2025)

方案选择对照

对比维度TRAC-Seq(m⁷G)HAC-Seq(m³C)tRNA 修饰测序tRNA 氨酰化测序LC-MS 修饰检测
修饰对象m⁷Gm³Cm¹A、m³C、m¹G、m²,²G覆盖较广(如 m¹A、m¹G、m³C、acp3U),位点为预测55 种核苷修饰(整体谱)
分辨率单碱基单碱基单碱基单碱基(预测)核苷层面的定量
核心原理NaBH₄/苯胺还原性切割肼-苯胺切割去甲基化处理对比(甲基化指数)逆转录错误掺入水解 + 单核苷 LC-MS/MS
额外信息m⁷G 位点与水平m³C 位点与水平tRNA 表达tRNA 表达与氨酰化整体核苷修饰状态

常见问题

LC-MS 和单碱基测序该怎么选?
LC-MS 从总 RNA 出发一次定量 55 种核苷修饰,给出整体修饰谱;测序方法则把具体修饰定位到特定 tRNA:m⁷G 用 TRAC-Seq,m³C 用 HAC-Seq,m¹A / m³C / m¹G / m²,²G 用 tRNA 修饰测序,氨酰化测序则兼顾较广的修饰覆盖与表达、氨酰化。
TRAC-Seq 如何实现 m⁷G 的单碱基检测?
TRAC-Seq 是 m⁷G 的单碱基分辨率化学检测方法:分离出的 tRNA 经去甲基化后用 NaBH₄/苯胺处理,在 m⁷G 位点特异性断裂;3′ 切割片段在 5′ 端连接接头,修饰位点即位于接头连接处,通过切割分数确定 m⁷G 位点与水平。
HAC-Seq 如何检测 m³C?
HAC-Seq 用肼与苯胺处理使 RNA 骨架在 m³C 位点断裂;样本先经去甲基化处理再做 HAC(DM-HAC),m³C 被去除,用于确认特异性。由于 HAC 产生的 5′ 片段 3′ 末端受损、无法连接接头,m³C 位点通过计算切割比例来识别。
能否在同一项目里组合 LC-MS 与单碱基测序?
可以。LC-MS 给出样本的整体修饰谱,测序方法把修饰位点定位到单碱基,tRNA 氨酰化测序还能补充表达与氨酰化;这些服务也可以与 tRNA 测序、tRF&tiRNA 测序、PCR 芯片组合使用。
生物信息分析包含哪些内容?
测序服务交付差异修饰分析、火山图、用于位点识别的 IGV 比对展示与修饰 tRNA 的序列 motif 分析;LC-MS 项目包含原始与归一化峰数据、核苷总离子流色谱图与样本间差异修饰,均附可直接使用的图表。

参考文献

  • [1] Kirchner S, et al. Emerging roles of tRNA in adaptive translation, signalling dynamics and disease. Nature Reviews Genetics, 2015. PMID: 25534324
  • [2] El Yacoubi B, et al. Biosynthesis and function of posttranscriptional modifications of transfer RNAs. Annual Review of Genetics, 2012. PMID: 22905870
  • [3] Torres AG, et al. Role of tRNA modifications in human diseases. Trends in Molecular Medicine, 2014. PMID: 24581449
  • [4] Orellana EA, et al. tRNA dysregulation and disease. Nature Reviews Genetics, 2022. PMID: 35681060