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m³C tRNA单碱基测序(m3C-IP-Seq)

m³C 常见于反密码子环第 32 位,直接影响密码子识别的精确性。该位点丰度相对较低,信号容易被背景淹没,对检出灵敏度的要求高于一般修饰。

m3C-IP-Seq 先用免疫沉淀富集含 m³C 的片段,再由转化读出在单碱基分辨率上记录修饰核苷酸——先富集再测序,弱位点也能进入检出范围。

服务优势

  • 抗体富集灵敏度:免疫沉淀富集含 m³C 的 tRNA 片段,提高弱位点检出率。
  • 位点级读出:富集之后做转化读出,在单碱基水平记录修饰核苷酸。
  • 低丰度样本友好:先富集再测序,适合 tRNA 修饰丰度偏低的样本。
  • 结构域解析:m³C 对 tRNA 结构与解码的影响可在位点层面追踪。
  • 与化学切割互补:可与无抗体的切割类方法交叉验证关键位点。

背景介绍

m3C-IP-Seq是一种以免疫沉淀富集为基础的 tRNA m³C 测序方法:先富集含 m³C 的片段,再由转化读出在单碱基分辨率上记录修饰核苷酸的位置。

m³C 常见于反密码子环第 32 位,直接影响密码子识别的精确性。位点丰度相对较低,信号容易被背景淹没,因此对检出灵敏度的要求比一般修饰更高。

免疫沉淀在这里的价值是把弱信号先集中起来:含 m³C 的片段被富集后再做转化读出,位点判定仍然落在单碱基上。抗体富集存在固有偏好,因此这条路线更适合用于筛查,关键位点可用化学切割类方法复核。

m3C-IP-Seq m³C 富集与单碱基读出原理

m3C-IP-seq 用抗体富集在单核苷酸分辨率上绘制 m³C 图谱,捕获 12 个细胞质与 2 个线粒体 tRNA isoacceptor,并可同时刻画 mRNA 与 lncRNA 上的 m³C 位点。 Gao Y, et al. Nucleic Acids Research 2025;53(5). PMID: 40071931

实验流程

样本质检RNA 完整性与纯度
m³C 免疫沉淀富集含 m³C 的片段
转化读出单碱基记录修饰位点
文库构建单碱基测序文库
测序与数据分析位点判定与定量

生物信息分析

位点鉴定与定量

读段比对到精选参考序列后判定转化特征,给出每个 m³C 位点的化学计量,并标注成熟 tRNA 相对坐标、基因归属、反密码子与结构域。

分布与 motif

汇总 m³C 在各类 tRNA 与各结构域上的分布,并做一致性 motif 统计。

交付内容

  • 原始 m³C tRNA 测序 FASTQ 数据文件,可直接提交至 GEO/SRA 等公共数据库。
  • 含 BAM 比对文件与关键比对指标的质控报告。
  • 高置信度单碱基 m³C 位点表(XLSX),含坐标、反密码子、isoacceptor 与化学计量。
  • m³C 在 tRNA 各结构域的分布图与一致性 motif 分析图(PDF/PNG)。
  • 组间差异修饰位点表(XLSX),含倍数变化等统计信息。
  • 兼容基因组浏览器的信号文件(bigWig/bedGraph)及结构化 tRNA 报告。

研究应用

  • 富集定位:在成熟 tRNA 上定位 m³C 位点,重点覆盖弱修饰。
  • 结构—功能关联:把位点级 m³C 与 tRNA 折叠稳定性、解码准确性关联起来。
  • 与化学法互验:交叉确认无抗体方法提示的 tRNA m³C 位点。
  • isoacceptor 比较:比较不同 isoacceptors 与 isodecoders 的 m³C 模式。
  • 低丰度样本:在修饰丰度偏低的样本中,用富集提升弱位点的检出机会。
  • 疾病相关:筛选应激或疾病状态下差异修饰的 tRNA m³C 位点。

常见问题

m3C-IP-Seq 采用抗体富集,会不会带来偏倚?
抗体富集确实存在固有偏好,这也是我们同时提供化学切割类方法的直接原因——两者互为补充:富集法擅长把丰度低、信号弱的位点拉出来,化学切割法则给出不依赖抗体的独立证据。实际项目中常见做法是先用富集法筛选,再用化学法复核关键位点。
m3C-IP-Seq 的结果精确到什么程度?
抗体富集先把低丰度的 m³C 片段拉出来,转化读出再把位置落到单个核苷酸。报告中的每个位点都带有定量值与位置信息,包括成熟 tRNA 相对坐标、反密码子与所属结构域。
报告里会给出哪些内容?
包括原始测序数据与比对质控报告、单碱基 m³C 位点表(含坐标、反密码子、isoacceptor 与化学计量)、结构域分布与 motif 图、组间差异位点表,以及可加载到基因组浏览器的信号文件。
适合哪些样本类型?
支持 total RNA、细胞、组织与血液等样本。样本采集后建议尽快低温保存、避免反复冻融;具体准备方式可参照送样指南,或寄送前与我们确认。

参考文献

  • [1] Gao Y, Hou J, Wei S, et al. Transcriptome-wide mapping of N3-methylcytidine modification at single-base resolution. Nucleic Acids Research 2025;53(5). DOI: 10.1093/nar/gkaf153