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NuRNA™ tRNA Modification Enzymes PCR芯片(H)

一次检测多个 tRNA 修饰酶的表达水平,用于锁定参与特定修饰的候选调控酶。

产品优势

  • 覆盖度广:囊括 UniProt 与 Modomics 中所有已知的 tRNA 修饰酶与蛋白因子,共 85 个。
  • 严谨性强:所有引物都在多样本中通过了严格验证。
  • 快速简易:即用型 384 孔板规格,加入 cDNA 与 qPCR Master Mix 后 4 小时内得到实验结果,cDNA 无需预先扩增。
  • 配套明确:建议配套 rtStar™ First-Strand cDNA Synthesis Kit(AS-FS-001)与 SYBR® Green Real-time qPCR Master Mix。
  • 从酶层面切入:修饰位点难以逐个追踪时,先看修饰酶的表达变化,是比较直接的一条线索。

背景介绍

NuRNA™ Human tRNA Modification Enzymes PCR Array是同时检测 85 个 tRNA 修饰酶及相关蛋白因子的 PCR 芯片,384 孔(4×96)板式,用于从修饰酶表达层面寻找候选调控因子。

tRNA 携带种类丰富、数目众多的转录后修饰。这些修饰参与 tRNA 的正确折叠与稳定性维持,也影响解码功能:位于颈环部位的修饰影响折叠与稳定性,反密码子环上的修饰与翻译准确性相关,34 号位置的修饰决定密码子的摆动性。

tRNA 修饰受各类修饰相关蛋白的动态调控,这些蛋白的突变或功能紊乱与多种疾病的发生有关——例如 NSUN2 负责催化胞嘧啶 5 位甲基化,其突变会导致机体头小畸形症;t6A 甲基转移酶 CDKAL1 功能紊乱可诱发Ⅱ型糖尿病。修饰如何被调控、对疾病治疗的意义,仍在进一步研究中。

对于特定通路或聚焦领域中的基因,PCR 芯片是表达研究可靠便捷的手段:一次实验即可把 85 个修饰酶的表达水平放在同一张板上比较。

tRNA 的丰度受动态调控,tRNA 及其降解片段参与胁迫信号与适应性翻译;tRNA 本身或影响其生成的基因发生突变,与多种复杂疾病相关。 Kirchner S, Ignatova Z. Nature Reviews Genetics 2015;16(2):98-112. PMID: 25534324

产品设计

检测范围

同时检测 85 个 tRNA 修饰酶及相关蛋白因子,384 孔(4×96)板式,覆盖 UniProt 与 Modomics 中已知的全部 tRNA 修饰酶。

产品列表

芯片货号规格描述
NuRNA™ Human tRNA Modification Enzymes PCR ArrayAS-NM-001-1384 (4x96)-well plate同时检测 85 个 tRNA 修饰酶及相关蛋白因子
NuRNA™ Human tRNA Modification Enzymes PCR Array (Roche Light Cycler 480)AS-NM-001-1-R384 (4x96)-well plate适配 Roche Light Cycler 480
完整列表:85 个 tRNA 修饰酶 / 蛋白因子(点击展开)
修饰酶 / 蛋白因子(括号内为对应的修饰类型)
tRNA修饰酶/蛋白因子(修饰类型) tRNA修饰及相关蛋白(85): ADAT1(m1I37)
ADAT2(m1I34)
ADAT3(-)
ALKBH1(mcm5U)
ALKBH8(mchm5U34/mcm5s2U34/mcm5U34/mcm5Um34)
C9orf64(-)
CDK5RAP1(ms2A37/ms2 i6A37)
CDKAL1(ms2A37/ms2 i6A37)
CDKL1(ms2t6A)
CTU1(mcm5S2U )
CTU2(mcm5S2U)
DUS1L(D16/17)
DUS2(D20)
DUS3L(D47)
DUS4L(D)
ELP3(-)
ELP4(mcm5s2U)
FBLL1(-)
FTSJ1(Cm32/Gm34)
GTPBP3(tm5U34)
HSD17B10(m1A9/m1G9)
IKBKAP(-)
KIAA0391(m1A9/m1G9)
KIAA1456(Um)
LAGE3(t6A37)
LCMT2(o2yW)
METTL1(m7G46)
METTL2A(Cm)
METTL2B(3mC)
MOCS3(mcm5S2U )
MTO1(tm5U34)
NAT10(Ac4C)
NFS1(s2U34/tm5s2U34)
NSUN2(m5C49)
NSUN6(m5C72)
OSGEP(t6A37)
OSGEPL1(t6A37)
PUS1(pseudouridine27/pseudouridine28)
PUS10(pseudouridine 55)
PUS3(pseudouridine39)
PUS7L(pseudouridine)
PUSL1(pseudouridine)
QTRT1 (Q34)
QTRT2 (Q34)
RPUSD1(pseudouridine)
RPUSD2(pseudouridine31/pseudouridine32)
RPUSD3(pseudouridine)
RPUSD4(pseudouridine31/pseudouridine32)
SSB(-)
TARBP1(-)
THUMPD1(Acetylcytidine)
THUMPD2(Gm)
THUMPD3(Gm)
TP53RK(t6A37)
TPRKB(t6A37)
TRDMT1(m5C38)
TRIT1(i6A37)
TRMO(m6t6A)
TRMT1(m2G26/m22G26)
TRMT10A(m1G9)
TRMT10B(m1G9)
TRMT10C(m1A9/m1G9)
TRMT11(m2G10)
TRMT112(mchm5U34/mcm5s2U34/mcm5U34/mcm5Um34)
TRMT12(o2yW)
TRMT13(m4C/m4A )
TRMT1L(m2G26/m22G26)
TRMT2A(Um)
TRMT2B(m5U54)
TRMT44(Um44)
TRMT5(m1G37/o2yW)
TRMT6(m1A58)
TRMT61A(m1A58)
TRMT61B(m1A58)
TRMU(s2U34/tm5s2U34)
TRUB1(pseudouridine)
TRUB2(pseudouridine55)
TYW1(o2yW)
TYW1B(o2yW)
TYW3(o2yW)
TYW5 (o2yW)
UBA5(cyclic t6A)
URM1(mcm5S2U)
WDR4(m7G46)
YRDC(t6A37)

注:tRNA修饰缩写参考Modomics数据库,基因名参考UniProt。

操作流程

即用型 384 孔板:将 cDNA 与 qPCR Master Mix 混合试剂加入 PCR 板即可,4 小时内得到实验结果,cDNA 无需预先扩增。

为保证芯片实验效果,建议配套使用 Arraystar rtStar™ First-Strand cDNA Synthesis Kit(AS-FS-001)与 Arraystar SYBR® Green Real-time qPCR Master Mix。

适用的 PCR 仪:ABI ViiA™ 7、ABI 7500 / 7500 FAST、ABI 7900HT、ABI QuantStudio™ 6 / 7 / 12K Flex;Bio-Rad CFX96 / CFX384;Roche LightCycler 480 / 480 II;Agilent Mx3000P / Mx3005P;Stratagene Mx3000P / Mx3005P;Eppendorf Realplex;QIAGEN Rotor-Gene Q。

数据分析

结果给出 85 个修饰酶与相关蛋白因子的相对表达量,支持组间比较与差异筛选。

配套的 Analysis Tool 可用于数据整理,输出结果可继续用于统计与作图,并按修饰类型归类查看。

研究应用

  • 修饰酶表达筛选:一次实验比较 85 个修饰酶的表达,锁定候选调控因子。
  • 与修饰检测组合:同一批样本可继续做 tRNA 修饰测序,把酶的表达与修饰水平对照分析。
  • 疾病相关研究:结合 NSUN2、CDKAL1 等修饰酶与疾病相关的既有报道,考察表达变化。
  • 通路聚焦:在特定通路或聚焦领域内做表达研究,避免逐个基因摸索条件。
  • 大样本比较:适合样本量较多、需要快速获得结论的比较研究。
  • 验证与互检:对测序或其他平台筛出的候选酶做独立定量复核。

相关资料

常见问题

这张芯片检测什么?
检测 tRNA 修饰酶基因的表达水平,覆盖参与甲基化、假尿嘧啶化等各类修饰的酶。把酶的表达变化与修饰位点数据放在一起看,可以推测哪些酶参与了修饰水平的调控。
为什么要把修饰酶和修饰位点一起看?
修饰位点告诉我们"哪里变了",修饰酶表达告诉我们"可能是谁做的"。两者对应起来,才能形成从酶到修饰的完整链条,也便于后续做功能验证。
和 tRNA 修饰测序怎么配合?
常见做法是用修饰测序获得位点与水平,再用本芯片筛选表达发生变化的修饰酶,之后挑选候选酶做敲低或过表达验证。

参考文献

  • [1] Kirchner S, Ignatova Z. Emerging roles of tRNA in adaptive translation, signalling dynamics and disease. Nature reviews Genetics 2015;16:98-112. PMID: 25534324
  • [2] El Yacoubi B, Bailly M, de Crecy-Lagard V. Biosynthesis and function of posttranscriptional modifications of transfer RNAs. Annual review of genetics 2012;46:69-95. PMID: 22905870
  • [3] Zhou B, Wei FY, Kanai N, Fujimura A, Kaitsuka T, Tomizawa K. Identification of a splicing variant that regulates type 2 diabetes risk factor CDKAL1 level by a coding-independent mechanism in human. Human molecular genetics 2014;23:4639-50. PMID: 24760768
  • [4] Zhang X, Cozen AE, Liu Y, Chen Q, Lowe TM. Small RNA Modifications: Integral to Function and Disease. Trends in molecular medicine 2016. PMID: 27840066
  • [5] Suzuki T, Nagao A, Suzuki T. Human mitochondrial tRNAs: biogenesis, function, structural aspects, and diseases. Annual review of genetics 2011;45:299-329. PMID: 21910628